БИОМЕДИЦИНСКИЙ ЖУРНАЛ МЕДЛАЙН.РУ
Содержание журнала

Архив

Редакция
Учредители

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Научно-клинический центр токсикологии имени академика С.Н. Голикова Федерального медико-биологического агентства»


Федеральное государственное бюджетное учреждение науки
Институт теоретической и экспериментальной биофизики
Российской академии наук


ООО "ИЦ КОМКОН"

Адрес редакции и реквизиты

199406, Санкт-Петербург, ул.Гаванская, д. 49, корп.2

ISSN 1999-6314


Клиническая медицина » Терапия • Гематология

Том: 16
Статья: « 72 »
Страницы:. 779-790
Опубликована в журнале: 4 сентября 2015 г.

English version

Влияние инактивации патогенов на качество и показатели биологической полноценности компонентов донорской крови

Чечеткин А.В., Касьянов А.Д., Солдатенков В.Е., Макеев А.Б.

ФГБУ «Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства»
(ФГБУ РосНИИГТ ФМБА России)


Резюме
В статье приведены материалы о влиянии методов инактивации патогенов на качество и биологические свойства компонентов крови. Показано, что обработка свежезамороженной плазмы и тромбоцитов методами, основанными на фотохимических реакциях и световом облучении, сопровождается изменениями гемостатического потенциала и степени клинической эффективности, выраженность которых зависит от особенностей действия патогенининактивирующих технологий. Изменения биологической полноценности патогенинактивированных компонентов крови целесообразно учитывать при проведении трансфузионной терапии у больных различного профиля.


Ключевые слова
редукция патогенов, компоненты крови, свежезамороженная плазма, тромбоцитный концентрат, клиническая эффективность.



(статья в формате PDF. Для просмотра необходим Adobe Acrobat Reader)



открыть статью в новом окне

Список литературы

1. Yokoyama T. Removal of small non-enveloped viruses by nanofiltration / T. Yokoyama , A.Wakisaka , M. Tanifuji et al. // Vox. Sang. – 2004. – Vol. 86, № 4. – Р. 225- 229.


2. Heger A. A biochemical comparison of a pharmaceutically licensed coagulation active plasma (Octaplas) with a universally applicable development product (Uniplas) and single-donor FFPs subjected to methylene-blue dye and white-light treatment / A. Heger , J. Römisch , T.E. Svae // Transfus. Apher. Sci. – 2006. – Vol. 35, № 3. – Р. 223- 233.


3. Mohr H. Inactivation of pathogens in single units of therapeutic fresh plasma by irradiation with ultraviolet light / H. Mohr , U. Gravemann , T.H. Müller. // Transfusion. – 2009. – Vol. 49, № 10. – Р. 2144-2151.


4. Чечеткин А.В. Предупреждение инфицирования ВИЧ при переливании донорской крови и ее компонентов / А.В. Чечеткин, А.Б. Макеев, В.Е. Солдатенков, и др. // ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии.– 2014. – № 4. – С. 64-68.


5. Lozano M. Implementation of pathogen reduction technologies for blood components for transfusion: updated table 2009-2010 / M. Lozano, J.-P. Cazenave, B. Braunig, M.-E. Behr-Gross // European committee (partial agreement) on blood transfusion (CD-P-TS). – Strasbourg, EDQM, 2013. – 4 p.


6. Allain J.P. Protecting the blood supply from emerging pathogens: the role of pathogen inactivation / J.P. Allain, C. Bianco, M.A. Blajchman et al. // Trasfus. Med. Rev. – 2005 – Vol. 19, № 2. – P. 110-126.


7. Strauss-Patko M. Routine fresh frozen plasma manufacture with pathogen inactivation by methylene blue (Theraflex MB–plasma) // Vox. Sang.– 2010. – Vol. 99, Suppl. 1.– Р. 253.


8. Shanmugam G. Vasoplegic syndrome – the role of methylen blue // Eur. J. Cardiothorac. Surg.– 2005. – Vol. 28, № 5. – Р. 705-710.


9. Müller-Breitkreutz K., Mohr H. Hepatitis C and human immunodeficiency virus RNA degradation by methylene blue/light treatment of human plasma // J. Med. Virol.– 1998. – Vol. 56, № 3. – Р. 239-245.


10. Knuever-Hopf J. Human parvovirus in plasma is highly sensitive to methylene blue/light treatment / J. Knuever-Hopf , W. Schaefer, A. Groener et al. // Vox. Sang. – 2010. – Vol. 99, Suppl. 1. – Р. 240.


11. Equitoni F. MB–Photoinactivated FFP is effective and safe for treatment of coagulation and bleeding disorders / F. Equitoni, G.Mistretta, M. Hortencio de Medeiros // Vox. Sang. – 2004. – Vol. 87, Suppl. 3. – P. 72.


12. del Rio-Garma J. ADAMTS-13 activity and von Willebrand factor levels in methylene-blue photo-inactivated plasma processed by either the Springe method or an “in house” system / J. del Rio-Garma, A. Pereira, J.L. Arroyo et al. // Vox. Sang. – 2008. – Vol. 95, № 2.– Р. 101-115.


13. Krol D. Usefulness of plasma subjected to pathogen reduction for cryoprecipitate production / D. Krol, B. Drybanska, J. Zyla et al. // Vox. Sang. – 2010. – Vol. 99, Suppl. 1.– Р. 239.


14. Плугарева И.В., Чечеткин А.В. Оценка качества вирусинактивированной донорской плазмы // Трансфузиология. – 2014. – № 1. – С. 57.


15. Riggert J. Filtration of methylene blue-photooxidized plasma: influence on coagulation and cellular contamination / J. Riggert, A. Humpe, T.J. Legler et al. // Transfusion. – 2001. – Vol. 41, № 1. – P. 82-86.


16. Nussbaumer W. Plasma related side effects (se) of inactivated plasma (methylene-blue treated) vs not inactivated plasma (quarantine stored) in adult and pediatric recipients / W. Nussbaumer, H. Schennach, P. Mayersbach et al. // Vox Sang. – 2014. – Vol. 107, Suppl. 1. – P. 121.


17. Prowse C. Properties of pathogen-inactivated plasma components // Transfus. Med. Rev. – 2009. – Vol. 23. – P. 124-133.


18. Pitkanen H. Enhanced thrombin generation and reduced intact protein S in processed solvent detergent plasma / H. Pitkanen, A. Jouppila, M.C. Mowinckel et al. // Thromb. Res. – 2015. – Vol. 135, № 1. – Р. 167-174.


19. Bocquet T. Experience converting from methylene blue to amotosalen treated plasma // Vox Sang. – 2014. – Vol. 107, Suppl. 1. – P. 121


20. Osselaer J.C. Coagulation function in fresh-frozen plasma prepared with two photochemical treatment methods: methylene blue and amotosalen / J.C. Osselaer , C. Debry , M. Goffaux et al. // Transfusion. – 2008. – Vol. 48, № 1. – Р. 108-117.


21. Lin L. Amotosalen interactions with platelet and plasma components: absence of neoantigen formation after photochemical treatment / L. Lin , M.G. Conlan , J. Tessman et al. // Transfusion. – 2005. – Vol. 45, № 10. – Р. 1610-1620.


22. de Alarcon P. Fresh frozen plasma prepared with amotosalen HCl (S– 59) photochemical pathogen inactivation: transfusion of patients with congenital coagulation factor deficiencies / P. de Alarcon, R. Benjamin, M. Dugdale et al. // Transfusion – 2005.– Vol.45, № 8. – P. 1362-1372.


23. Lehmann C. Pathogen inactivation of single donor plasma / C. Lehmann, S. Rummler, C. Kummer, D. Barz // Vox. Sang. – 2010. – Vol. 99, Suppl. 1. – Р. 242.


24. Lachert E. Quality control of riboflavin and UV light treated plasma using the Mirasol PRT system / E. Lachert, J. Antoniewicz- Papis, A. Dzieciatkowska et al. // Vox. Sang. – 2010. – Vol. 99, Suppl. 1. – Р. 255.


25. Bihm D.J. Characterization of plasma protein activity in riboflavin and UV light– treated fresh frozen plasma during 2 years of storage at – 30 degrees C / D.J. Bihm, A. Ettinger, K.A. Buytaert– Hoefen et al. // Vox. Sang.– 2010. – Vol. 98, № 2. – Р. 108-115.


26. Maia S. Mirasol treated plasma evaluation at centro regional de sangue do Porto (instituto portugues do sangue) Porto, Portugal / S. Maia, M.L. Dobao, L. Queiros, A. et al. // Vox. Sang. – 2010. – Vol. 99, Suppl. 1. – Р. 245.


27. Голованова И.С. Разработка технологии фотоинактивации патогенов в гемокомпонентах / И.С. Голованова, Т.Д. Муравьева, С.С. Бессмельцев и др. // Трансфузиология. – 2014.– № 2.– С. 54-55.


28. Salado W. In vitro evaluation of platelet concentrates pathogen reduced with Theraflex UV – platelets procedure / W. Salado, C. Sumian, F. Dehaut et al. // Vox. Sang .– 2014. – Vol. 107, suppl. 1. – P. 129.


29. Quaglietta A. Post-transfusional absolute platelet increment: a comparison between standard and inactivated platelet concentrates / A. Quaglietta, M. Di Saverio, A. Pompa et al. // Vox. Sang. – 2010. – Vol. 99, Suppl. 1. – Р. 255-256.


30. Pohler P. Platelet concentrates in an autologous animal model / P. Pohler, J. Lehmann, V. Veneruso et al. // Vox. Sang. – 2010.– Vol. 99, Suppl. 1. – Р. 255.


31. Osselaer J.C. A prospective observational cohort safety study of 5106 platelet transfusions with components prepared with photochemical pathogen inactivation treatment / J.C. Osselaer, N. Messe, T. Hervig et al. // Transfusion. – 2008 Vol. 48, № 6. – Р. 1061-1071.


32. Cui Z. Inactivation of lymphocytes in blood products using riboflavin photochemical treatment with visible light / Z. Cui, Y. Huang, Q. Mo, X. Wang // Photochem. Photobiol. – 2008. – Vol. 84, № 5. – Р. 1195-1200.


33. Antoniewicz-Papis J. Lymphocyte survival/activation in stored platelet concentrates following gamma– irradiation or pathogen reduction technology treatment / J. Antoniewicz– Papis, J. Wozniak, A. Krzywdzinska et al. // Vox. Sang. – 2010. – Vol. 99, Suppl. 1. – Р. 18.


34. Brixner V. Clinical safety and efficacy of red blood cell components treated with the S-303 pathogen inactivation system – a randomized controlled double-blind phase 3 study in patients requiring transfusion support of acute anemia / V. Brixner , A.H. Kiessling, K. Madlener et al. // Vox. Sang. – 2015. – Vol. 109, Suppl. 1. – Р. 28-29.


35. Nussbaumer W. In vitro evaluation of pathogen inactivated apheresis RBC using the S-303 treatment system / W. Nussbaumer, H. Volland 1, H. Schennach et al. // Vox. Sang. – 2015. – Vol. 109, Suppl. 1. – Р. 191.


36. Yonemura S. Effects of Mirasol pathogen reduction technology on red blood cell function over the course of storage as whole blood or packed red blood cells / S. Yonemura, S. Larkin, S. Doane // Vox. Sang. – 2015. – Vol. 109, Suppl. 1. – Р. 188.


37. Mundt J. Whole blood storage after treatment with riboflavin and uv illumination: a pre-clinical study in Sub-Saharan Africa / J. Mundt, S. Owusu-Ofori., J. Kusi et al. // Vox. Sang. – 2014. – Vol. 107, suppl. 1. – P. 126.